세프라이프 ®6FF 고속 유동 아가로스 크로마토그래피 수지

빠른 흐름 아가로스 크로마토그래피 수지

세플라이프 6FF

세프라이프 ®6FF 고속 유동 아가로스 크로마토그래피 수지 제품 개요:

세프라이프 ® 6FF  빠른 흐름 아가로스 크로마토그래피 수지  Seplife의 가교 결합으로 형성됩니다 ® 6B  아가로스 크로마토그래피 매체 . 높은 유량, 높은 적재량 및 낮은 특정 흡착으로 화학적 안정성과 물리적 특성이 크게 향상됩니다. 회수율이 높고 여러 번 재사용할 수 있습니다. 다음에 사용할 수 있습니다.  겔 여과 크로마토그래피  그리고  단백질의 정제 ,  핵산  그리고  펩타이드  하류의  생물제약 및 생물공학 .

세프라이프 ®6FF 고속 유동 아가로스 크로마토그래피 수지 매개변수:

세프라이프 ®6FF 고속 유동 아가로스 크로마토그래피 수지  테스트 지침:

1. 컬럼 패킹
포장은 표준 운영 절차에 따라 수행됩니다. 각 재료가 작동 온도에 있는지 확인해야 하며, 포장하기 전에 젤을 탈기해야 합니다.
2.평형
로딩 저울의 2~5 컬럼 볼륨으로 컬럼의 평형을 맞추고 유출물의 전도도와 pH가 로딩 버퍼의 전도도와 pH와 정확히 동일한지 확인합니다.
3. 샘플 로딩
(1) 시료는 완충액으로 준비하여 탁도가 높은 시료는 원심분리하여 여과한 후 적재한다. 염 함량이 과도하거나 농도가 너무 낮은 시료는 먼저 처리한 후 적재한다.
(2)시료성분의 분리는 성분의 분자량에 따라 매질을 통해 분리하며, 분자량을 먼저 흘려준다.
(3) 로딩 볼륨은 컬럼 볼륨의 약 1-2%이며, 작을수록 분리 성능이 더 좋습니다.
4. 용출
용출은 완충액을 사용하여 수행되었으며, 용출 중 유속과 완충액 조성은 일정하게 유지되었습니다.
5. 재생
일반적으로 균형을 맞추기 위해 완충액으로 세척하고 다시 사용할 수 있습니다. 일부 불활성화된 단백질이나 지질은 재생 중에 세척할 수 없으며 CIP(in-place cleaning)로 제거할 수 있습니다.
6.CIP
(1) 이온결합 단백질의 경우 2M NaCl의 0.5~1 컬럼베드부피로 제거가 가능하다.
(2) 침전된 단백질, 소수성 결합 단백질 또는 지질의 경우 0.1M NaOH의 1컬럼 베드 볼륨으로 제거할 수 있습니다. (3) 강하게 소수성 결합된 단백질, 지질 등의 경우 70% 에탄올 또는 30% 이소프로판올의 4~10컬럼 볼륨으로 세척할 수 있습니다. 그러나 유기 용매의 농도는 구배 방식으로 점진적으로 증가해야 하며 그렇지 않으면 거품이 발생하기 쉽습니다.
세척이 완료된 후 pH와 전도도가 변하지 않을 때까지 평형 완충액의 3배 이상의 부피로 컬럼을 평형화합니다.
7. 보관
밀봉하여 4~30℃(보관용액에 20% 에탄올 포함)에서 건조하고 통풍이 잘되며 깨끗하고 얼리지 않은 상태로 보관합니다. 사용된 컬럼은 4℃, 20% 에탄올 용액에 보관합니다.

세프라이프 ®6FF 고속 유동 아가로스 크로마토그래피 수지  주의:

(1)겔 여과를 사용하기 전에 시료량을 최대한 농축해야 합니다.
(2)시료는 입자가 없이 맑아야 합니다.
(3) 최상의 분해능을 얻기 위해서는 적재량은 베드체적의 5%를 초과할 수 없습니다.
(4)컬럼크로마토그래피는 시료채취 후 반드시 실시해야 하며 크로마토그래피 매체는 용출 완충액과 충분히 평형을 이루어야 한다.
(5)기둥 베드는 평평해야 하며 홈이나 기포가 없어야 합니다. 그렇지 않은 경우 다시 조립해야 합니다.
(6)단백질의 안정성과 활성을 보호하기 위해 완충정제단백질을 선택한다.
(7)단백질과 배지 사이의 비특이적 이온 상호작용을 피하기 위해 최대 0.15 mol/L NaCl을 완충액에 첨가할 수 있습니다.
(8)대상 단백질의 분자량에 따라 중간분리범위에 가장 가까운 매질을 선택한다.
(9) 용출과정에서는 유속을 엄격히 조절해야 하며 너무 빠르지 않도록 해야 한다.
(10)적재 및 전체 용출 과정 동안 실린더 표면이 건조되는 것을 방지합니다.
(11)본 제품은 산화제와의 접촉을 피하고 장시간 공기 중에 노출되는 것을 피해야 합니다.