셉라이프 ®6FF 고속 흐름 아가로스 크로마토그래피 수지

빠른 흐름 아가로스 크로마토그래피 수지

셉라이프 6FF

셉라이프 ®6FF 고속 흐름 아가로스 크로마토그래피 수지 제품 프로필:

셉라이프 ® 6FF  고속 흐름 아가로스 크로마토그래피 수지  Seplife의 가교결합으로 형성됩니다. ® 6B  아가로스 크로마토그래피 매체 . 높은 유속, 높은 로딩 및 낮은 비흡착성을 통해 화학적 안정성과 물리적 특성이 크게 향상됩니다. 회수율이 높아 여러번 재사용이 가능합니다. 그것은 사용될 수 있습니다  겔 여과 크로마토그래피  그리고  단백질의 정제 ,  핵산  그리고  펩타이드  하류  바이오의약품 및 생명공학 .

셉라이프 ®6FF 고속 흐름 아가로스 크로마토그래피 수지 매개변수:

셉라이프 ®6FF 고속 흐름 아가로스 크로마토그래피 수지  테스트 지침:

1. 컬럼 포장
포장은 표준 운영 절차에 따라 수행됩니다. 각 재료가 작동 온도에 있고 젤을 포장하기 전에 가스를 제거해야 하는지 확인해야 합니다.
2.평형
로딩 밸런스의 2~5 컬럼 볼륨으로 컬럼을 평형화하여 유출물의 전도도 및 pH가 로딩 버퍼의 전도도 및 pH와 정확히 동일한지 확인합니다.
3.샘플 로딩
(1) 완충액으로 시료를 준비하고 탁한 시료를 원심분리 및 여과하여 로딩합니다. 염분 함량이 너무 높고 농도가 너무 낮은 샘플을 먼저 처리한 후 로드해야 합니다.
(2) 매질에 의한 시료 성분의 분리는 성분의 분자량에 따라 진행되며, 먼저 분자량이 유출됩니다.
(3) 로딩 볼륨은 컬럼 볼륨의 약 1-2%이며, 작을수록 분리 성능이 좋습니다.
4.용출
용출은 완충액을 사용하여 수행되었으며, 용출 동안 유속과 완충액 조성은 일정하게 유지되었습니다.
5.재생
일반적으로 완충액으로 세척하여 균형을 맞추고 다시 사용할 수 있습니다. 일부 비활성화된 단백질이나 지질은 재생 중에 씻어낼 수 없으며 CIP(In-Place Cleaning)를 통해 제거할 수 있습니다.
6.CIP
(1) 이온 결합 단백질의 경우 2M NaCl의 0.5~1 컬럼 베드 부피로 제거할 수 있습니다.
(2)침전된 단백질, 소수성 결합 단백질 또는 지질의 경우 1 컬럼 베드 부피 0.1M NaOH로 제거할 수 있습니다. (3) 소수성이 강하게 결합된 단백질, 지질 등의 경우 4~10 컬럼 부피의 70% 에탄올 또는 30% 이소프로판올로 세척할 수 있습니다. 다만, 유기용매의 농도를 구배적으로 증가시키면 기포가 쉽게 발생하므로 주의해야 한다.
세척이 완료된 후 pH와 전도도가 변하지 않을 때까지 최소 3층 부피의 평형 완충액으로 컬럼을 평형화합니다.
7. 보관
밀봉하여 4~30°C(보관 용액에 20% 에탄올)에서 건조하고 통풍이 잘 되며 깨끗하고 얼지 않은 상태로 보관합니다. 사용한 컬럼은 4°, 20% 에탄올 용액에 보관합니다.

셉라이프 ®6FF 고속 흐름 아가로스 크로마토그래피 수지  주의:

(1) 겔 여과를 사용하기 전에 시료량을 최대한 농축해야 합니다.
(2) 샘플은 입자 없이 명확해야 합니다.
(3)최고의 해상도를 얻으려면 로딩 용량이 베드 용량의 5%를 초과할 수 없습니다.
(4) 컬럼 크로마토그래피는 시료를 채취한 후 수행해야 하며 크로마토그래피 매체는 용출 완충액과 완전히 평형을 이루어야 합니다.
(5) 컬럼 베드는 평평해야 하며 홈과 기포가 없어야 합니다. 그렇지 않으면 다시 조립해야 합니다.
(6) 단백질의 안정성과 활성을 보호하기 위해 완충 정제 단백질을 선택합니다.
(7) 단백질과 배지 사이의 비특이적 이온 상호 작용을 피하기 위해 최대 0.15 mol/L NaCl을 완충액에 첨가할 수 있습니다.
(8) 목적 단백질의 분자량에 따라 중간 분리 범위에 가장 가까운 배지를 선택합니다.
(9) 용출 과정에서 유속은 엄격하게 제어되어야 하며 너무 빠르지 않아야 합니다.
(10) 로딩 및 전체 용출 과정에서 실린더 표면이 건조되는 것을 방지합니다.
(11)본 제품은 산화제와의 접촉을 피하고 공기에 장기간 노출되는 것을 피해야 합니다.